En las secciones siguientes se describen los procedimientos de muestreo al azar y de muestreo transversal que implementan actualmente varios organismos Estatales y Federales de monitorización de la calidad del agua. Los protocolos de mayor aceptación en estos momentos, especialmente cuando se utilizan niveles analíticos de partes por millares de millones, requieren el empleo de procedimientos de muestreos limpios. Estos procedimientos de muestreo ayudan a reducir (en la medida factible dados los recursos corrientes) la cantidad de contaminación introducida cuando se recogen muestras de control de calidad en el terreno. Los procedimientos de muestreo "limpios" involucran (1) usar equipos construidos de materiales no contaminantes y que se hayan limpiado rigurosamente antes del trabajo en el terreno y entre sitios; (2) manejar los equipos en formas que minimicen la contaminación; (3) tomar, procesar y manejar muestras en una manera que impida la contaminación; y (4) recoger muestras para control de caidad (QC) de rutina.
Técnicas de Manos Limpias/Manos SuciasLos procedimientos de muestreo "limpios," incluidas las técnicas de ML/MS, son necesarios cuando se recogen muestras inorgánicas para determinar la presencia de metales y otros oligoelementos. Los procedimientos de muestreo limpio se recomiendan para todos los demás muestreos, en la medida en que resulte razonable, pero particularmente cuando el analizando objeto podría estar sujeto a contaminación en el terreno o de los procedimientos de laboratorio a un nivel que podría sobrepasar DQOs con fines de información e interpretación. Las técnicas ML/MS separan las funciones en el terreno y dedican un individuo como "manos limpias" para tareas relacionadas con tener contacto directo con la muestra. A continuación se presenta un resumen de estas técnicas:
Se recomiendan las siguientes prácticas en el terreno cuando se toman muestras para determinar la presencia de metales y oligoelementos:
En las tablas sumarias 3 y 4 se dan detalles específicos sobre los requisitos para métodos de tomar muestras al azar y muestras integradas en profundidad y los requisitos de preservación, almacenamiento, y manejo de estas muestras. En las secciones siguientes sobre muestreo al azar y muestreo transversal se resumen las técnicas básicas de obtención de muestras de agua.
Muestreo Tomado al AzarLas muestras tomadas al azar se indican en la tabla 2 para OCD I, II, y III. Una muestra tomada al azar, como se explica en una sección anterior, es colocado en un recipiente abierto desde un solo punto en la superficie de un arroyo/río/lago/embalse, o cerca de ella. Las muestras tomadas al azar pueden tomarse con un recipiente suspendido o de mano de polipropileno (NalgeneTM) de 5-galones, vertedor desechable o frasco angosto de boca abierta. Si la muestra tomada al azar es recolección por métodos de mano, el muestreador colector deberá vadear hasta el lugar donde se tomará la muestra (preferiblemente en el centroide de la corriente o en el canal de paso) y sumergir un frasco de mano de boca angosta. Las muestras de agua deben recogerse antes de hacer ningún otro trabajo en el lugar. Si se hace otro trabajo (por ejemplo, recolección de muestas sedimentaruas, medición de caudal, o evaluación biológica/de hábitat) antes de la recolección de las muestras de agua, una muestra representativa será difícil recoger de una corriente alterada. El muestreador colector deberá pararse corriente abajo de la botella durante la operación de llenado. Deberá tenerse cuidado de evitar tomar partículas que estén suspendidas como consecuencia del vadeo. Algunos ejemplos de muestras tomadas al azar son muestras de inmersión, discretas y de bomba. Las muestras de inmersión normalmente se recogen sumergiendo el envase de recolección (de un material no contaminante correcto) en la capa superior del cuerpo de agua. Se recogen muestras discretas o puntuales ya sea (1) bajando un tomamuestras hasta una profundidad especificada y después recogiendo una muestra abriendo y cerrando el tomamuestra, o (2) usando un tomamuestras monoetápico, que se llena cuando el nivel de la corriente sube hasta una altura predeterminada. Los tomamuestras de tanque y algunos de bomba son los que más se usan para tomar muestras por el método 1. Aunque estos tomamuestras se prevéen principalmente para muestrear aguas calmas, se los puede adaptar para aguas que fluyen lentamente. Los tomamuestras monoetápicos usados en el método 2 incluyen el U-59 y son útiles en estaciones sobre corrientes rápidas o en otros lugares donde es difícil llegar a una estación para tomar muestras manualmente. Los muestreos con bombas se recogen típicamente mediante aspiración o sistemas de bombas sumergibles destinadas a tomar muestras para verificar la calidad del agua. Los sistemas de bomba pueden ser portátiles o estar instalados permanentemente y automatizados para el muestreo.
Para una muestra de calidad del agua de rutina donde el agua cerca de la superficie es representativa de la masa de agua, puede tomarse una muestra de agua sumergiendo directamente el recipiente debajo de la superficie del agua hasta una profundidad de 1 pie. Puede usarse una cubeta para tomar una muestra si la capa superficial mixta es poco profunda o accesible solamente desde un puente. Si se usa una cubeta, deberá tenerse sumo cuidado para evitar contaminar la muestra con desechos de la soga y del puente. Deberá tenerse cuidado también de enjuagar la cubeta entre estaciones. En los ríos lentos, embalses y estuarios, la profundidad de la capa mixta puede determinarse en base a mediciones en el terreno ubicando el termoclino o un cambio abrupto en la conductancia específica. En las masas de agua influenciadas por las mareas, la capa superficial mixta se define como la parte de la columna de agua desde la superficie hasta la profundidad en que la conductancia específica es 6,000 µS/cm mayor que la conductancia específica en la superficie. Para muestras de capas superficiales mixtas (profundidad de más de 1 ft), preenjuagar uno de los siguientes dispositivos de muestreo al menos una vez con agua nativa antes de usar: tubo de bomba sumergible, Kemmerer, o Van Dorn. Deberá tomarse un volumen mínimo de 3 L de cada sitio. Los recipientes de la muestra no tienen que ser enjuagados con el agua del sitio. Deberá tenerse cuidado en todo momento durante la recolección, manejo y transporte de las muestras, para evitar exponer la muestra a la luz solar directa. En la tabla 3 se presenta información sobre el procesamiento y preservación de muestras y tiempos de retención del método del muestreo al azar, incluídos información sobre los metales disueltos en el agua.
Tabla 3. Resumen de métodos de muestreo y requisitos de conservación, almacenamiento y manejo | |||||
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[mL, mililitro; L, litro; °C, grados Celsius; conc., concentrado; <, menor que; >, mayor que; g, gramo; SAF, sulfato de amonio ferroso; µm, micrómetro; ML/MS, manos limpias/manos sucias; ft, pie; OVC, orgánicas volátiles compuestas; BTEX, benceno, tolueno, etilbenceno, xilenos; qt, cuarto; ADI, agua desionizada] | |||||
Propiedad o componente | Recipiente(s) | Muestra volumen (mL) | Preservación | Tiempo máximo de retención | Procedimiento(s) |
Muestra de Agua | |||||
Muestra de agua
de rutina (3 recipientes: 2 sin preservativos, 1 preservado con H2SO4) |
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Alcalinidad | Plástico o vidrio de 1 cuarto o 1-L | 100 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro | 14 días |
Rotular los frascos con el número de identificación del sitio, el nombre de la estación, la fecha, la hora y el código de designación de la muestra. Poner una X sobre la tapa del recipiente para identificar la muestra acidificada. No es necesario preenjuagar los recipientes con agua ambiente. Llenar cada recipiente con agua ambiente sumergiéndolo aproximadamente un pie por debajo de la superficie en medio de la corriente hasta que se llene. Poner inmediatamente la muestra sobre hielo. Acidificar el recipiente X lo antes posible. Poner sobre hielo y despachar lo antes posible. * Es preferible que las muestras se filtren en el terreno o en el laboratorio lo antes posible ** Si los nitratos y nitritos se analizan por cromatografía iónica, no se necesitará la acidificación. Para otros métodos de análisis, preservar con H2SO4 a pH <2 por un tiempo de retención de 28 días. *** En Métodos Estándar, debería filtrar las muestras lo antes posible y los filtros pueden almacenarse congelados por 21 a 30 días. Otras autoridades dicen filtrar las muestras y que pueden almacenarse por tiempo indefinido. |
Total de sedimento suspendido, sedimento suspendido | do. | 400 | do. | 7 días | |
Cloro (Cl ) | do. | 100 | do. | 28 días | |
Sulfato (SO4 ) | do. | 100 | do. | 28 días | |
Orthophosphate phosphorus (PO4-P) | do. | 150 | do. | Filtrar LAP*; 48 horas hasta el análisis | |
Nitrato + Nitrito (NO2 + NO3)** | do. | 150 | do. | 28 días | |
Amoníaco (NH3) | do. | 150 | 1 a 2 mL conc. H2SO4 a pH <2 y enfriar hasta 4 °C, oscuro |
28 días | |
Fósforo total | do. | 150 | do. | 28 días | |
Carbono orgánico total | do. | 100 | do. | 28 días | |
Clorofila a | Plástico o vidrio marrón de un cuarto o 1-L | 1,000 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro | Filtrar dentro de las 48 horas | |
Feofitina a | Los filtros pueden almacenarse con-gelados por 30 días*** | ||||
Nitrito | do. | 50 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro | 48 horas | |
Disuelto de Sólidos total | do. | 250 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro | 7 días | |
Dureza | Plástico o vidrio de un cuarto o 1-L | 250 | Sin filtrar, enfriar hasta 4 °C, oscuro, O Filtrado 2 mL conc. H2SO4 o HNO3 hasta pH <2; Enfriar hasta 4 °C, oscuro |
48 horas
6 meses |
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Muestra de agua al azar | |||||
Aceite y grasa | Bote de vidrio con tapa revestida de TeflonTM-enjuagado con hexano o cloruro de metileno. | 1,000 | 2 mL conc. H2SO4 a pH<2; Enfriar hasta 4 °C, oscuro | 28 días | |
Fenoles | Bote de vidrio con tapa revestida de TeflonTM | 1,000 | 2 mL conc. H2SO4 a pH<2; Enfriar hasta 4 °C, oscuro | 28 días | |
Cianuro | Un cuarto o 1-L de plástico | 1,000 | 2 mL 1:1 NaOH agregado a pH >12; 0.6 g de ácido ascórbico si se encuentra cloro residual. Enfriar hasta 4 °C, oscuro | 14 días | |
Demanda bioquímica de oxígeno | Galón de plástico | >4,000 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro; agregar 1 g de cristales de SAF por litro si se encuentra cloro residual | 48 horas | |
Demanda química de oxígeno | Un cuarto o 1L de plástico | 110 | 2 mL conc. H2SO4 a pH <2; Enfriar hasta 4 °C, oscuro | 28 días | |
Metales en agua | |||||
Disuelto (excepto Hg) | Botella de plástico de un cuarto limpiada con HNO3 | 1,000 | Filtrar en el sitio del muestreo con un filtro en línea de 0.45 micrones en un recipiente preacidificado de HNO3 ultra puro a pH <2 | 6 meses |
Metales disueltos (incluye cromo hexavalente) Ponerse guantes de látex sin polvo usando
la técnica de Manos Limpias/Manos Sucias: Total metales Ponerse guantes de látex sin polvo usando
la técnica de Manos Limpias/Manos Sucias: |
Mercurio disuelto | do. | 1,000 | Filtrar en el sitio de la muestra con un filtro en línea de 0.45 micrones en un recipiente preacidificado de HNO3 ultra puro a pH <2 | 28 días | |
Total (excepto Hg) | do. | 1,000 | Recipiente preacidificado con 5 mL de HNO3 ultra puro a pH <2 | 6 meses | |
Total mercurio (Hg) | do. | 600 | Recipiente preacidificado con 5 mL de HNO3 ultra puro a pH <2 | 28 días | |
Cromio hexavalente (filtrado) | Plástico o vidrio | 600 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro | 24 horas; debe notificar al laboratorio por adelantado | |
Materias Orgánicas/Pesticidas en el Agua | |||||
Orgánicas volátiles Compuestas (OVC) | Dos viales de VOA de 40-mL | 80 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro; o 2 a 4 gotas de HCl a pH < 2, enfriar hasta 4 °C, oscuro para BTEX | 14 días | |
Materias Orgánicas
Pesticidas y herbicidas Pesticidas Organofosforosos Pesticidas Organoclorados Herbicidas Clorados
Orgánicas semivolátiles |
Bote de vidrio de 1 qt con tapa revestida de TeflonTM por tipo de muestra; debe estar pre-enjuagado con hexano, acetona o cloruro de metileno | 1,000 Cada tipo de muestra requiere 1,000 mL en un recipiente separado |
Enfriar hasta 4 °C, oscuro
Si hay presencia de cloro, agregar 0.1 gramo de tiosulfato de sodio |
7 días hasta la extracción |
Rotular cada recipiente antes de tomar con número de etiqueta/número único identificador de la muestra, Localización de la Estación, Fecha, y "ORGANICAS-Pesticidas Organofosforosos o Pesticidas Organoclorados, o Herbicidas Clorados" o "SEMIVOLÁTILES" (dependiendo del tipo de muestra). Llenar el bote de un cuarto hasta el tope. Poner en la oscuridad y sobre hielo. |
Muestras Biológicas | |||||
Toxicidad en el agua | Dos de 1-gal de vidrio o de plástico | 8,000 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro | 7 días |
Rotular cada recipiente antes de tomar con el número de localización de la Estación, fecha, y tipo de muestra.M Jalar recipientes para abrir. No es necesario preenjuagar el recipiente con agua ambiente. Sumergír cada recipiente aproximada mente une pie por debajo de la superficie en medio de la corriente hasta que se llene. Poner inmediatamente la muestra sobre hielo y despachar lo antes posible. |
Muestras de Garantía de Calidad | |||||
Duplicados de Campo | |||||
Representa la variabilidad introducida durante el muestreo, la preservación y la manipulación. Una de cada 10 muestras recoleccións o en base al 10 por ciento. Tomar dos juegos de muestras de agua de rutina en el mismo lugar, en forma consecutiva, usando los mismos métodos. Las muestras son manipuladas, almacenadas, despachadas y analizadas siguiendo procedimientos idénticos. Esto se aplica a todos los casos de procedimientos de rutina para tomar agua de superficie, incluidas muestras tomadas al azar, muestras tomadas al azar en cubetas desde puentes, bombas y otros aparatos de muestreo de aguas o sedimentos. Cada juego de muestras tiene un número de etiqueta separado. Presentar ambos juegos de muestras de agua al mismo laboratorio para análisis; ROTULAR la etiqueta RFA como DUPLICADO. |
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Blancos de Viaje | |||||
Se presenta un juego de muestras de ADI para muestras orgánicas volátiles solamente. Se preparan blancos de ADI en el laboratorio, se transportan al terreno y se preservan (conforme a las instrucciones) junto con las demás muestras. El blanco de viaje demuestra que la manipulación de los recipientes y de la muestra no introdujo contaminación. |
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Blancos Metálicos | |||||
Metales Disueltos | |||||
Para evaluar la contaminación de muestras de metales disueltos en el agua, se presentan BLANCOS DE CAMPO al laboratorio por cada viaje de muestreo. Los blancos se recogen en la última estación de un viaje de muestreo o día de muestreo. El ADI se obtiene del laboratorio. Se presentará como muestra en blanco 1,000 mL de ADI sin metales que se ha extraído a través de un nuevo filtro. Purgar el tubo con a, mL de ADI libre de metales. Se seguirá el procedimiento de rutina descrito para tomar el total de metales en el agua. Rotular el recipiente con BLANCO DE METALES DISUELTOS y un número de etiqueta de muestra separado (se usa la misma etiqueta RFA para muestras de metales disueltos y metales en agua); ROTULAR la etiqueta RFA como BLANCO. |
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Total Metales | |||||
Para evaluar la contaminación de las muestras totales de metales en el agua, se presentan al laboratorio BLANCOS DE CAMPO por cada viaje de muestreo. Los blancos se recogen en la última estación de un viaje de muestreo o día de muestreo. Se presentará como muestra en blanco 1,000 mL de ADI libre de metales que se ha hecho pasar por un tubo limpio. Purgar el tubo con 500 a 1,000 mL de ADI libre de metales. Se seguirá el procedimiento de rutina descrito para tomar el total de metales en el agua. Rotular el recipiente con BLANCO DE TOTAL METALES y el número de etiqueta de la muestra (se usa la misma etiqueta RFA para muestras con metales disueltos y total de metales en el agua); ROTULAR la etiqueta RFA como BLANCO. |
El muestreo transversal (en este manual se usa para denotar un compuesto integrado transversalmente, ponderado en función de la corriente) se logra utilizando tomamuestras integradores en profundidad con boquillas que se llenan isocinéticamente. Un tomamuestras isocinético opera de una forma en que la mezcla de agua-sedimento se mueve dentro del tomamuestras sin que haya cambio de velocidad ni dirección (velocidad) cuando el agua ingresa en la entrada del tomamuestras. Este método de muestreo garantiza que la concentración de sedimentos en la mezcla de sedimentos en agua en el tomamuestras y la concentración de sedimentos en la corriente sea la misma. Un tomamuestras icocinético se baja por una vertical (el centro de cada incremento o parte de la sección transversal de la corriente) a una velocidad de tránsito predeterminada. La velocidad de tránsito (la velocidad en que se baja y se levanta el tomamuestras) es principalmente una función del diámetro de la boquilla del tomamuestras, el volumen del recipiente del tomamuestras, la velocidad de la corriente y la profundidad del muestreo. La velocidad de tránsito debe mantenerse constante durante el descenso y también durante el ascenso del tomamuestras por una vertical. Tres métodos de muestreo diferentes basados en el uso de tomamuestras isocinéticos son el método vertical simple en el centroide del flujo, el método de incremento de descargas iguales (IDI) y el método de incremento de anchos iguales (IAI). Estos métodos serán resumidos en esta sección. El centroide de la corriente es el punto en el incremento en que la descarga es igual a ambos lados. El número de incrementos necesarios para obtener una muestra ponderada en función de la descarga en un sitio está relacionado principalmente con la exigencia de DQOs y con la calidad de la mezcla u homogeneidad de la corriente con respecto a las características físicas, químicas y biológicas (variación) de la sección transversal. En la tabla 4 se presenta la información sobre procedimientos y preservación de muestras y tiempos de retención para el método de muestreo representativas/integradas en profundidad.
Tabla 4. Resumen de métodos de muestreo transversal integrado en profundidad y requisitos de conservación, almacenamiento y manejo | |||||
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[mL, mililitro; °C, grados Celsius ppmm, partes por mil millones; N, normalidad; ML/MS, manos limpias/manos sucias; ADI, agua desionizada IPI, incremento de profundidad igual; EAI, incremento de anchos iguales; ss, sedimento suspendido; mg/L, miligramo por litro; µm, micrómetro; mm, milímetro; COD/COS, carbono orgánico disuelto/carbono orgánico suspendido; <, menor que; >, mayor que; DBO, demanda bioquímica de oxígeno; g, gramo; SAF, sulfato de amoníaco ferroso; cm, centímetro] | |||||
Propiedad o componente | Recipiente(s) | Muestra volumen (mL) | Preservación | Tiempo máximo de retención | Procedimiento(s) |
Muestras de Agua | |||||
Muestras de agua de
rutina (los volúmenes de muestra integrada en profundidad par materias inorgánicas y COD/COS están combinados en el dispositivo separador) |
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Conductancia específica, pH, turbidez | Los volúmenes de muestras no filtradas para frascos se expenden de separadores dinámicos o de embudo | 250 | Sin preservativos/no es necesario enfriar | 6 meses |
Antes de iniciar las recoleccións en el terreno, se lava todo el equipo en la oficina o el laboratorio, siguiendo los protocolos ultra limpios/ppmm/ML/MS indicados de este manual. Rotular los frascos con el número de identificación del sitio, el nombre de la estación, la fecha, la hora y el código de designación de la muestra. Enjuagar todos los frascos de muestras inorgánicas tres veces con ADI y después llenarlos hasta la mitad con ADI para transportarlos al terreno. Enjuagar todo el equipo de muestreo y los dispositivos de separación completamente tres veces con agua nativa antes de tomar la primera muestra. Tomar el volumen requerido de agua por los métodos correspondientes (sección transversal (IDI/IAI) centroide del flujo) empleando las técnicas de ML/MS. Combinar muestras integradas en profundidad en el separador dinámico o separador de embudo. Para corrientes donde las concentraciones de SS son de 2,000 mg/L o mayores, se recomienda el separador de embudo. Filtrar las cantidadess requeridas (con un filtro de cápsula de 0.45 µm preacondicionado con 1 litro de ADI) para oligoelementos disueltos, nutrientes, iones grandes y alcalinidad. Colocar la muestra sobre hielo inmediatamente. Enviar lo antes posible. La muestra de COS/COD es filtrada en una unidad de barril filtrador de acero inoxidable usando un filtro de plata de 47 mm de diámetro preacondicionado con ADI exenta de materias orgánicas. *Los volúmenes de COS filtrado varían con la concentración de sedimentos en suspensión, como sigue: sedimentos en suspensión (ss) <30 mg/L-filtro 250 mL; ss 30-300 mg/L-filtro 100 mL; ss 300 a 1,000 mg/L-filtro 30 mL; y ss >2,000 mg/L-filtro 10 mL. Retirar cuidadosamente el filtro de plata de COS, doblarlo por la mitad con los sedimentos adentro y colocarlo en un disco de Petri de plástico, anotar el volumen del filtrado sobre el disco y colocarlo en una bolsa de plástico cerrable. |
Alcalinidad, fluoruro, cloruro, sulfato, vanadio | Los volúmenes de muestras filtradas se bombean del dispositivo separador a través del filtro de cápsula | 500 | do. | 6 meses | |
Ortofosfato fosforoso (PO4-P) |
Volúmenes de muestra filtrados expendidos a través del filtro de cápsula en un frasco de polietileno marrón | 125 | Enfriar a 4 °C, oscuro | Enviar inmediatamente al laboratorio para análisis. 48 horas |
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Nitrato + Nitrato (NO2 + NO3) |
do. | do. | 28 días | ||
Amoníaco (NH3) + N orgánico | do. | do. | 28 días | ||
Nitrito (NO2) | do. | do. | 48 horas | ||
Amoníaco (NH3) + fósforo total N orgánico | Volúmenes de muestra sin filtrar expendidos del separados | 120 | 1 mL 4.5N H2SO4 and Enfriar a 4 °C, oscuro | Enviar inmediata-mente al laboratorio para análisis. 28 días |
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COD, carbono orgánico disuelto | Frasco de vidrio ámbar prehorneado, no preenjuagado | 5-120 | Enfriar a 4 °C, oscuro | Filtrar in situ | |
COS, carbono orgánico suspendido | do. | 10-250* | do. | Los filtros pueden almacenarse congelados 30 días | |
Muestra de agua al azar | |||||
Demanda bioquímica de oxígeno (DBO) | Botella de DBO con tapón | 300 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro; agregar 1 gramo de cristales de SAF por litro si hay presencia de cloro residual | 48 horas | |
Oligoelementos en Agua | |||||
Oligoelementos disueltos- aluminio, antimonio, arsénico, bario, berillio, boron, cadmio, cromo, cobalta, cobre, hierro, plomo, litio, manganeso, molibdeno, níquel, selenio, plata, Estroncio, uranio, vanadio, zinc |
Enjuaguar las botellas con 25 a 50 mL de agua nativa filtrada | 250 | Filtrar en el lugar del muestreo con un filtro de cápsula de 0.45-µm, acidificar con ampollas de HNO3 TeflonTM | 6 meses |
Limpiar todo el equipo usando el proceso de limpieza incluído en este manual. Tomar la muestra con los mismos protocolos con que usaba recoger otras muestras integradas en profundidad. El equipo de muestreo, el separador y la tubería de TeflonTM deben ponerse en remojo durante 30 minutos en una solución de HCL al 5 por ciento. Filtrar el volumen de muestra requerido con un filtro de cápsula dentro de la tubería de 0.45 micrones (preacondicionado con 1 litro de ADI). Usar 25 a 50 mL de muestra filtrada para enjuagar la botella de oligoelementos (llenarlo hasta la parte superior del labio inferior de la botella de 250-mL). Llenar la botella de muestra designado solamente hasta la parte superior del labio superior de la botella de muestra para llegar a un volumen total filtrado de alrededor de 250 mL. |
Materias Ogánicas/Pesticidas en el Agua | |||||
Materias orgánicas | La muestra es filtrada y vertida en un frasco de vidrio de ámbar horneado de 1 litro* | 1,000 | Enfriar a 4 °C, oscuro | 7 días hasta la extracción |
Preenjuagar el filtro (placa de 142-mm) con 100mL de agua nativa, como mínimo. Filtrar con un filtro de fibra de vidrio horneada (tamaño de poros de 0.7-µm.) Recoger ~ 1 L aproximadamente de muestra filtrada sin preenjuagar la botella, dejando 2 cm de espacio superior en la botella. Determinar el volumen exacto de la muestra filtrada restando el peso de tara del peso de la botella de muestra llenada. Enjuagar todo equipo/tubería en contacto con la muestra de pesticida con metanol para pesticidas. |
Pesticidas y herbicidas | do. | 1,000 | Enfriar hasta 4 °C, oscuro Si hay presencia de cloro, agregar 0.1 gramo de tiosulfato de sodio | 7 días hasta la extracción | |
Muestras de Garantía de Calidad | |||||
Blancos de Laboratorio/Equipos de Campo | |||||
Se requiere un blanco de equipo de laboratorio tanto para materias inorgánicas (metales y nutrientes disueltos) como para el carbono orgánico. Son requeridas por el protocolo inorgánico que se tomará al menos una vez por año por el equipo que se usa para tomar muestras de bajo nivel para componentes inorgánicos. Es una muestra en blanco que es generada en el laboratorio para verificar que la limpieza y el mantenimiento del equipo es adecuada para prevenir la contaminación del agua nativa cuando se recoge una muestra medioambiental. Se requieren dos blancos de equipo en el terreno para materias inorgánicas y carbono inorgánico y se requiere uno para pesticidas al menos una vez por año. Un blanco de equipo en el terreno es una solución en blanco que es generada en condiciones reales en el terreno y está sujeta a los mismos aspectos de recolección de muestras, procesamiento en el terreno, preservación, transporte y manipulación en el laboratorio que las muestras medioambientales. Los blancos de equipo en el terreno se debe preparar inmediatamente antes de tomar y procesar una muestra de agua nativa en un sitio seleccionado y deben prepararse usando agua en blanco sin materias inorgánicas o sin materias orgánicas, pero no ambas en el mismo lugar. | |||||
Blancos de Equipo Inorgánicos | |||||
Tomar dos muestras iniciales de solución fuente, una para cada plan si fuera necesario. Después del enjuague inicial, llenar la botella del tomamuestras con blanco de agua y verter por la boquilla en la bombona de vidrio; Verter el resto del agua en blanco del tomamuestras en el separador dinámico; volver a llenar el tomamuestras y repetir hasta que el agitador contenga unos 5 litros de agua; bombear una parte alícuota de agua en blanco del separador dinámico, usando el sistema de bombeo de rutina, en un frasco de muestra para el blanco de bomba de oligoelemento. Bombear dos partes alícuotas de solución de agua en blanco desde el separador dinámico a través del sistema de filtración preacondicionado en dos frascos de muestra para los blancos de equipo en el terreno con nutrientes y oligoelementos disueltos. Preservar todas las muestras conforme a lo requerido: presentar al laboratorio solamente las muestras blanco de equipo en el terreno (nutrientes filtrados y oligoelementos disueltos) y almacenar el resto de las muestras para análisis posterior, si fuera necesario. | |||||
Blancos Orgánicos de Equipo | |||||
Tomar dos muestras iniciales (1 litro y 125 mL) de solución fuente, una para cada programa, si fuera necesario. El enjuague del tomamuestras deberá simular lo más aproximadamente posible el enjuague en el terreno que ocurre antes de tomar la muestra medioambiental. Rellenar el tomamuestras y repetir hasta que la bombona de vidrio contenga al menos 2 a 3 litros de agua; bombear una parte alícuota de blanco de agua desde la bombona de vidrio pasando por el sistema de filtración de pesticida preacondicionado para el blanco de equipo del pesticida Volver a llenar el tomamuestras y verter otros 2 a 3 litros de blanco de agua en el separador dinámico; tomar una parte alícuota a través de la llave del agitador y bombearla a través del sistema de filtración preacondicionado COS/COD; después de acondicionar el filtro con 100 mL, filtrar 100 mL adicionales y presentar el filtrado y el filtro para el blanco de equipo de COS/COD. |
El método (VCF) usa un centroide del flujo para la sección transversal de la corriente y por lo tanto se muestrea solamente una vertical. En otras palabras, se recoge una muestra integrada en profundidad en la vertical de concentración media ponderada en función del flujo. Consecuentemente para el uso correcto de este método, la sección deberá estar bien mezclada verticalmente y lateralmente con respecto a las concentraciones de los analizandos objetivo. Deberán seguirse estos pasos para usar el método VCF:
El objetivo del método IDI consiste en tomar una muestra ponderada de descargas que represente todo el caudal que pasa por la sección transversal, obteniendo una serie de muestras, cada una representando volúmenes iguales de descarga. El método IDI requiere que el flujo en la sección transversal se divida en incrementos de descarga igual. Se recogen muestras de igual volumen en el centroide de cada uno de los incrementos de descarga igual en la sección transversal. Las muestras se recogen pasando el tomamuestras por una vertical ubicada en el centroide de cada IDI. El colector de muestras debe: (1) usar equipo de muestreo isocinético, de integración en profundidad (Apéndice D), (2) usar el mismo tamaño de frasco y boquilla de tomamuestras en cada una de las verticales, (3) Usar la misma velocidad de tránsito constante durante cada ascensión y descenso en las verticales y (4) combinar las muestras de todas las verticales en el equipo de combinación correspondiente.
Los siguientes pasos resumen el método IDI:
El número de incrementos de descargas iguales seleccionados para un sitio de muestreo se rige por los factores descritos en los pasos siguientes y no deberán determinarse arbitrariamente.
NOTA TÉCNICA: Si el canal de flujo es estable en la sección transversal a ser muestreada, los gráficos de la descarga acumulativa o la descarga acumulativa porcentual en varias etapas pueden basarse en las mediciones de descargas históricas. La ubicación de los centroides de incrementos de descargas iguales puede determinarse en base a estos gráficos de modo que no tengan que hacerse mediciones de descarga antes de cada muestreo. Puede hacerse una interpolación lineal entre curvas IDI basada en la descarga. Sin embargo, estas curvas IDI requieren verificación ocasionalmente, a diferencia de las mediciones de descargas recientes.
Directrices para seleccionar la velocidad de tránsito de muestreo IDI
Para el método IAI, la sección transversal del caudal se divide en un número de incrementos de anchos iguales. Las muestras se recogen bajando y levantando el tomamuestras por la columna de agua en el centro de cada incremento. La combinación de la misma velocidad de tránsito constante utilizada para muestrear en cada vertical y la propiedad isocinética del tomamuestras resulta en una muestra ponderada en función de las descargas que es proporcional al caudal total.
Los pasos siguientes resumen el método de IAI:Las muestras transversales generalmente se componen para producir una muestra de la calidad del agua que es representativa de la descarga del flujo total en la estación de muestreo. Esta composición puede realizarse depositando el volumen de cada muestra de cada vertical en un separador dinámico--un recipiente de polietileno que menea lentamente la muestra compuesta con un disco de polipropileno. Debido a que el separador dinámico requiere 3 a 8 L de agua compuesta, es posible que se necesite muestrear más de una vez las verticales en una corriente estrecha. Todas las verticales deben muestrearse el mismo número de veces para retener la representatividad de la muestra con respecto al caudal. Es también importante agitar al retirar partes alícuotas de muestra del separador. No usar un separador dinámico para componer muestras recogidas para determinar presencia de MOV, carbono orgánico, petróleo y grasa, pesticidas, herbicidas o bacterias, porque sus componentes plásticos tienen el potencial de absorber y contaminar las muestras. Usar en vez recipientes de vidrio para muestrear estos parámetros con el método de muestreo al azar.
La opción de usar el protocolo de partes por millón/miligramos por litro o el protocolo de partes por mil millones/microgramos por litro se basa en el nivel de reporte mínimo (NRM) requerido en el plan de muestreo. El nivel de microgramos por litro es el nivel de concentración en que se reporta rutinariamente la mayoría del trabajo analítico y que se ha establecido para la mayoría de los reglamentos Federales de agua potable. El protocolo de partes por mil millones con su ultra bajo MPL (microgramos por litro) requiere ciertas prácticas de campo, tales como manos limpias/manos sucias (ML/MS), equipo apropiado de limpieza/manipulación de muestras y un plan/muestreo de QC riguroso/apropiado para garantizar que ocurra una contaminación mínima durante todo el muestreo para la calidad del agua y el procedimiento de procesamiento.
Algunos compuestos requieren diferentes métodos de muestreo. Verificar siempre con el laboratorio que realizará los análisis acerca del tipo de recipiente y el volumen, la preservación y los tiempos de retención. En el plan de muestreo deberán incluirse descripciones claras de los analizandos selectos, tiempos de retención y preservativos, antes de tomar las muestras. Los parámetros/analizandos corrientes, tiempos de retención y preservativos tanto para métodos de muestreo al azar como integrados en profundidad están listados en las tablas 3 y 4.
Las muestras deben envolverse y embalarse en recipientes para que sean recibidas intactas en el laboratorio. Registrar todos los números de identificación en las notas de campo o en el diario de operaciones en el terreno. Comunicarse con el laboratorio acerca del plazo de entrega y el método de envío. Seguir el procedimiento necesario, completar las formas requeridas y retener copias para poder seguir las muestras después del envío.
El afianzamiento de la validez de los datos medioambientales o la QA se logra recogiendo muestras para QC, revisando y analizando datos de QC y haciendo ajustes de los procedimientos de tomar datos basados en los resultados. Debido a que el muestreo medioambiental se hace de una manera relativamente descontrolada sujeto a muchas variables, grandes fuentes de errores pueden existir. Por lo tanto, las medidas de control sobre la recolección de muestras para la calidad del agua son esenciales para contestar todas las preguntas concernientes a la validez de los datos. Los planes de QA deben contener procesamientos planeados y sistemáticos, que son necesarios para dar confianza en que los datos satisfacerán los requisitos establecidos para la calidad. Puede encontrarse información detallada sobre la garantía de calidad y ejemplos de control de calidad en la documentación general y en la documentación generada por las entidades específicas responsables de recopilar datos sobre la calidad del agua. Esta sección da un examen de los tipos de ejemplos de QC que son requeridos normalmente por los planes de QA.
Las soluciones en blanco o "blancos" son soluciones (agua desionizada o de enjuague) que tienen concentraciones del analizando objetivo inferiores a los límites indicados para los métodos de detección, según lo certifican los laboratorios. Estas soluciones se emplean para desarrollar tipos específicos de muestras en blanco. Los blancos de equipo son soluciones en blanco que se procesan en todos los equipos utilizados para tomar y procesar una muestra medioambiental. Una vez analizados, los blancos indican la eficacia de la limpieza de los equipos en el terreno. Los blancos de equipo deben tomarse después de muestrear la estación con la contaminación más elevada. Los blancos de campo son recipientes de agua desionizada que se someten a los mismos aspectos de la recolección de muestras, procesamiento en el terreno y preservación, transporte y manipulación de laboratorio a que se someten las muestras medioambientales. Los blancos de campo se utilizan para determinar la contaminación en el laboratorio y la contaminación cruzada durante la recolección y el envío de las muestras. Los blancos de viaje son recipientes de agua desionizada que se ponen en el mismo tipo de frasco como los usados para muestras medioambientales y se mantienen con el juego de frascos de muestras antes y después de tomar la muestra. Estos blancos son usados para detectar la contaminación que ocurrió durante el transporte o el almacenamiento de la muestra o en el laboratorio. Se utilizan muestras duplicadas para evaluar el comportamiento en aquellas partes del proceso que son duplicadas. Las muestras duplicadas se recogen de tal manera que las muestras se consideren esencialmente idénticas en su composición. Muchos tipos de muestras duplicadas son posibles y cada una puede producir resultados algo diferentes en condiciones hidrológicas dinámicas. Los duplicados separados que se envían a diferentes laboratorios se utilizan para garantizar que los resultados de los diferentes laboratorios se mantengan comparables. Los duplicados separados que se envían al mismo laboratorio se utilizan para medir la variabilidad del laboratorio. Los duplicados simultáneos o secuenciales se utilizan para garantizar que las muestras recogidas con diferentes tomamuestras o por métodos diferentes de muestreo se mantengan comparables. Las muestras enriquecidas son muestras que tienen concentraciones conocidas de componentes específicos a fin de minimizar el cambio en la matriz de las muestras originales. Los datos de exactitud reflejan los mejores resultados que puedan esperarse en el momento en que se analizaron las muestras y los datos de recuperación reflejan una desviación de una matriz de muestras medioambientales.
La Mayoria de los planes QA y las muestras QC toman en cuenta lo siguiente: